針法熒光定量PCR試劑盒反應流程常規程序
反應流程常規程序:
將PCR反應所需的成分配置完後,在PCR儀(yi) 上於(yu) 94-96℃預加熱幾十秒至幾分鍾,使模板DNA充分變性,然後進入擴增循環。在每一個(ge) 循環中,先於(yu) 94℃保持30秒鍾使模板變性,然後將溫度降到複性溫度(一般50-60℃之間),一般保持30秒鍾,使引物與(yu) 模板充分退火;在72℃保持1分鍾(擴增1kb片段),使引物在模板上延伸,合成DNA,完成一個(ge) 循環。重複這樣的循環25~35次,使擴增的DNA片段大量累積。最後,在72℃保持3-7min,使產(chan) 物延伸完整,4℃保存。
2.複性(退火)和延伸溫度
複性的溫度是PCR擴增是否順利的關(guan) 鍵因素,通常在50-60℃之間。具體(ti) 的溫度主要由引物的Tm值決(jue) 定。延伸溫度絕大多數設定為(wei) 72℃。如果複性的溫度很高,可以將延伸溫度和複性溫度設置成同一溫度,變成二步法PCR。
3.反應時間
變性步驟一般使用30秒鍾,如果模板的G+C含量較高,或直接用細胞做模板,變性時間可適當延長。複性時間有30秒種一般是足夠的。延伸時間由擴增產(chan) 物的大小決(jue) 定,一般采用1kb用1分鍾來保證充足的時間。
4.循環次數
循環次數主要與(yu) 模板的起始數量有關(guan) ,在模板拷貝數為(wei) 104~105數量級時,循環數通常為(wei) 25~35次。
平台效應(plateaueffect):PCR擴增過程後期會(hui) 出現的產(chan) 物的積累按減弱的指數速率增長的現象。原因:底物和引物的濃度已經降低,dNTP和DNA聚合酶的穩定性或活性降低,產(chan) 生的焦磷酸會(hui) 出現末端產(chan) 物抑製作用,非特異性產(chan) 物或引物的二聚體(ti) 出現非特異性競爭(zheng) 作用,擴增產(chan) 物自身複性,高濃度擴增產(chan) 物變性不*。
5.PCR反應液的配製
PCR反應體(ti) 係的配置方式有時也會(hui) 影響反應的正常進行。常規方法與(yu) 其它酶學反應一樣,在最後加入DNA聚合酶。早期的PCR儀(yi) 沒有帶加熱的蓋子,要求在反應液上覆蓋一層礦物油,防止水分蒸發。
對於(yu) 使用具3’-5’外切活性的高溫DNA聚合酶時,有時會(hui) 擴增不出產(chan) 物。在遇到這個(ge) 問題時,如果將反應成分分開配製,A管含模板、引物和dNTP,以及調整體(ti) 積的H2O,B管含緩衝(chong) 液、DNA聚合酶和水,然後再將兩(liang) 管溶液混合起來,可較好地克服這個(ge) 問題。
按照常規的方法配製反應體(ti) 係,有時會(hui) 出現非特異性擴增的問題。熱啟動(hotstart)PCR操作方式可較好解決(jue) 這一問題。將dNTP、緩衝(chong) 液,Mg2+和primer先配製好,然後加入一粒蠟珠(如AmpliWaxPCRQam100),加熱熔化,再冷卻,使蠟將溶液封住,最後加入模板和DNA聚合酶等剩餘(yu) 成分。隻有當PCR反應進入高溫階段後,蠟層熔化,所有反應成分才會(hui) 混合在一起。