製備感受態細胞與轉化
製備感受態細胞:
1、從(cong) 37℃培養(yang) 16-20h的平板中挑取一個(ge) 單菌落(直徑2-3mm),轉到一個(ge) 含有100mlLB或SOB培養(yang) 基的1L燒瓶中。於(yu) 37℃劇烈振搖培養(yang) 3h。一般經驗,1OD600約含有大腸杆菌DH1×109個(ge) /ml。
為(wei) 達到轉化,活數務必少於(yu) 108 細胞/ml,對於(yu) 大多數大腸杆菌來說,這相當於(yu) OD600值為(wei) 0.4左右。為(wei) 保證細菌培養(yang) 物的生長密度不致過高,可每隔15-20min測定OD600 來監測,用監測的時間及OD600 列一個(ge) 圖表,以便預測培養(yang) 物OD600值達到0.4的時間,當OD600值達到0.35時,收獲細菌培養(yang) 物。
在菌株和菌株之間,OD600值與(yu) 每毫升活細胞數見的關(guan) 係變化很大,因此有必要通過測定特異大腸杆菌的生長培養(yang) 物在生長周期的不同時相的OD600值,並將各稀釋濃度的培養(yang) 物鋪於(yu) 物抗生素的LB瓊脂板以計算每一時相的活細胞數,從(cong) 而使分光光度計讀數得到標準化。
2、將細菌轉移到一個(ge) 無菌、一次性使用的、用冰預冷的50ml聚丙烯管中,在冰上放置10min,使培養(yang) 物冷卻至.0℃。
3、於(yu) 4℃用Sorvall GS3 轉頭以4100r/min離心10min,以回收細胞。
4、倒出培養(yang) 液,將管倒置1min以使zui後的痕量培養(yang) 液流盡。
5、每50ml初始培養(yang) 液用30ml預冷的0.1mol/L MgCl2-CaCl2溶液(80mmol/L MgCl2,20mmol/L CaCl2)重懸每份細胞沉澱。
6、於(yu) 4℃用Sorvall GS3 轉頭以4100r/min離心10min,以回收。
7、倒出培養(yang) 液,將管導致1min以使zui後的痕量培養(yang) 液流盡。
8、每50mo初始培養(yang) 物用2ml用並預冷的0.1mol/L CaCl2(或TFB)重懸每份細胞沉澱。
9、此時,可以按步驟10-16用新鮮製備的感受態細胞直接做轉化實驗,也可以將細胞凍存於(yu) -70℃。
轉化:
包括陽性和陰性對照
10、用冷卻的無菌吸頭從(cong) 每份用CaCl2溶液製備的感受態懸液中西區200ul轉移到無菌離心管(17*100mm)中,每管加入DNA(用不超過10ul的體(ti) 積,其中的DNA小於(yu) 50ng),輕輕旋轉以混勻內(nei) 容物,在冰中放置30min。
11、將管放入預加熱至42℃的循環水浴中,恰恰放置90s,不要搖動管。
熱激是一個(ge) 關(guan) 鍵步驟,準確地達到熱敷溫度非常重要。
12、快速將管轉移到冰浴中,使細胞冷卻1-2min。
13、每管加800ulSOC培養(yang) 基,用水浴將培養(yang) 基加溫至37℃,然後將管轉移到搖床上,溫育45min,使細菌複蘇並表達質粒編碼的抗生素抗性標記基因。
複蘇期中應於(yu) 37℃溫和地搖動細胞(用低於(yu) 50r/min轉速的搖床)。
14、將適當體(ti) 積(每個(ge) 90mm平板達200ul)已轉化的感受態細胞轉移到含20mmol/L MgSO4和相應抗生素的SOB瓊脂培養(yang) 基上。
如果用四環素作為(wei) 選擇標記,全部的轉化混合物可以鋪在一個(ge) 單獨的平米上(或軟瓊脂中),可以現在微量離心機哈桑室溫離心20s以收集轉化菌,加100ulSOC重懸沉澱,輕輕混勻。
重要:玻璃鋪菌器需先在乙醇在浸泡,然後在酒精燈上灼燒,待它涼至室溫後,才可將轉化菌輕輕地鋪在瓊脂板上。
如檢查氨苄的抗性,用轉化菌鋪平板時密度應較低(每個(ge) 90mm平板不超過104菌落),於(yu) 37℃培養(yang) 的時間按不超過20h。氨苄抗性的轉化體(ti) 可將β-內(nei) 酰胺酶分泌到培養(yang) 基中,迅速滅活菌落周圍區域的。這樣,鋪平板時密度過高或培養(yang) 時間按過長都會(hui) 導致出血對氨苄敏感的衛星菌落。在選擇培養(yang) 基中不用氨苄而用羧苄,以及將抗生素濃度從(cong) 60ug/ml提高到100mg/ml,可使情況有所改善,但不能產(chan) 地*之。抗氨苄的增加與(yu) 平皿上所加的細菌數的增加並無線形比例關(guan) 係,這可能是因為(wei) 被抗生素殺死的釋放生長抑製物質的緣故。
15、將平板置於(yu) 室溫直至液體(ti) 被吸收。
16、倒置平皿,於(yu) 37℃培養(yang) ,12-16h後可出現菌落。
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