樣本要求
在收集標本前都必須有一個(ge) 完整的計劃，必須清楚要檢測的成份是否足夠穩定。我們(men) 提倡新鮮標本盡早檢測，對收集後當天就進行檢測的標本，及時儲(chu) 存在4℃備用，如有特殊原因需要周期收集標本，請造模取材後，將標本及時分裝後放在-20℃或-70℃條件下保存。因冰室與(yu) 室溫存在一定溫差，蛋白極易降解，直接影響實驗質量，所以避免反複凍融。代測放免標本的客戶取材前須向我司銷售人員索要說明書(shu) ，具體(ti) 操作注意事項請與(yu) 我司技術人員溝通。

液體(ti) 類標本：標本必須為(wei) 液體(ti) ，不含沉澱。包括血清、血漿、尿液、胸腹水、腦脊液、細胞培養(yang) 上清、組織勻漿等。

血清：室溫血液自然凝固10-20分鍾後，離心20分鍾左右（2000-3000轉/分）。收集上清。如有沉澱形成，應再次離心。

血漿：應根據試劑盒的要求選擇EDTA、檸檬酸鈉或肝素作為(wei) 抗凝劑，加入10%（v/v）抗凝劑(0.1M檸檬酸鈉或1%heparin 或2.0%EDTA.Na2)混合10-20分鍾後，離心20分鍾左右（2000-3000轉/分）。仔細收集上清。如有沉澱形成，應再次離心。

尿液、胸腹水、腦脊液：用無菌管收集。離心20分鍾左右（2000-3000轉/分）。仔細收集上清。如有沉澱形成，應再次離心。

細胞培養(yang) 上清：檢測分泌性的成份時，用無菌管收集。離心20分鍾左右（2000-3000轉/分）。仔細收集上清。檢測細胞內(nei) 的成份時，用PBS（PH7.0-7.4）稀釋細胞懸液，細胞濃度達到100萬(wan) /ml左右。通過反複凍融，以使細胞破壞並放出細胞內(nei) 成份。離心20分鍾左右（2000-3000轉/分）。仔細收集上清。保存過程中如有沉澱形成，應再次離心。

組織標本：切割標本後，稱取重量。加入一定量的PBS，緩衝(chong) 液中可加入1μg/L蛋白酶抑製劑或50U/ml的Aprotinin（）。用手工或勻漿器將標本勻漿充分。離心20分鍾左右（2000-3000轉/分）。仔細收集上清置於(yu) -20度或-70度保存，如有必要，可以將樣品濃縮幹燥。分裝後一份待檢測，其餘(yu) 冷凍備用。